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      大鼠大腦皮層神經(jīng)元細胞培養實(shí)驗——機械性劃割培養

      發(fā)布時(shí)間: 2021-12-05  點(diǎn)擊次數: 1391次

      材料與儀器

      SD大鼠
      硼酸硼砂緩沖液 胰酶-EDTA 消化液 D-Hanks’
      眼科剪 滴管 離心機 培養皿 CO2培養箱

      步驟


      一、實(shí)驗步驟
       
      1. 孕16 d SD 大鼠經(jīng)戊巴(匕匕)妥鈉麻醉后,碘酒、75%乙醇消毒腹部皮膚,依次剪開(kāi)皮膚、肌肉、皮下筋膜,無(wú)菌操作下取出胚胎放入預冷的D-Hanks’平衡鹽液中。
       
      2. 在解剖顯微鏡下分離并取出胚胎大腦皮層,除去腦膜,剪碎組織成約1mm3 大小,加入胰酶-EDTA 消化液并放入 37℃孵箱內消化20 min,中間搖晃一次。
       
      3. 隨后用滴管吸出組織轉移到裝有預冷的培養液(DMEM+10%FBS)的離心管內終止消化液作用5 min。
       
      4. 用滴管吸出組織轉移到裝有預冷的 DMEM+10%FBS 的離心管內,用火焰拋光的巴斯德滴管吹打數次,靜置后取上清吸到另一支離心管內。重復上述步驟 2~3 次。
       
      5. 將所收集的上清經(jīng)200 目篩網(wǎng)過(guò)濾。
       
      6. 過(guò)濾后的細胞懸液于800 rpm 離心5 min,棄上清,管內加入新鮮培養液(DMEM+20%FBS)并吹打 成單細胞懸液。
       
      7. 細胞計數,調整細胞密度按1.5x105/cm2  種入6 孔板內,放入CO2 孵箱中培養。培養48 h 后換液并 加入Ara-C使其終濃度為 1x10-5 mM/L。Ara-C作用24 h 后全量換液。以后每隔 3 天半量換液一次。


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